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ELISA 檢測常用樣本處理方法
點擊次數(shù):1379 更新時間:2021-09-15
  ELISA是一種快速、靈敏、準確可靠的定量分析方法。樣本的處理對于 Elisa 實驗的成功有舉足輕重的作用。
 
  利用 ELISA 進行檢測的樣本類型包括:血液(血清、血漿),組織勻漿、細胞裂解液、細胞培養(yǎng)上清,皮膚組織、尿液、糞便、肺泡灌洗液、唾液、腦脊液、胸腹水、前列腺液、陰道分泌物等。
 
  下面我們就常用的樣本處理方法:
 
  血液樣本
 
  血液采取后應盡快進行處理,使血清(漿)從與血細胞接觸的全血中分離出來。
 
  Q: 血清與血漿的區(qū)別?
 
  A: 血清是血液凝固后缺少纖維蛋原的血漿,故血漿中除尚含有纖維蛋白原和 抗凝劑外,其他成份均等同于血清。
 
  Q: 選擇血清還是血漿樣本?
 
  A: 由于血清中缺乏很多的凝血因子,但有凝血產物。如果測凝血因子建議選擇血漿樣本;同時血漿中有纖維蛋白原,如果纖維蛋白原對待檢測指標有影響,建議選擇血清樣本。
 
  大多數(shù)情況下二者均可以選擇。
 
  處理方法:
 
  血清:將收集于血清分離管的全血標本在室溫放置 2 小時或 4 度過夜,然后1000×g 離心20分鐘,取上清即可。這是一個讓血液自然凝固的過程,溫度越低,凝集越緩慢,可根據(jù)需要添加促凝劑。
 
  血漿:血漿樣本需要抗凝,一般建議用2.0%EDTA,1%肝素,3.8%枸櫞酸鈉作為抗凝劑采集標本,并將標本在采集后的30分鐘內于2~8度1000g離心15分鐘,取上清即可檢測。根據(jù)待檢測目標物的性質不同選取不同的抗凝劑。
 
  枸櫞酸鈉(檸檬酸鈉):Ca2+有凝血作用,枸櫞酸鈉能與血液中的鈣離子形成可溶性的螯合物,從而阻止血液凝固。配成 109mmol/L的濃度和血液1:9, 106mmol/L的濃度和血液1:4
 
  缺點:血液中溶解度低,抗凝作用較弱。
 
  優(yōu)點:對凝血因子有很好的保護作用,大部分凝血試驗都可用枸櫞酸鈉抗凝。
 
  二胺四乙酸(EDTA)鹽:與血液中的鈣離子結合形成配位化合物, 從而阻止血液凝固。15g/L EDTA和血液 1:10
 
  優(yōu)點:對紅細胞和白細胞形態(tài)影響小。
 
  缺點:影響血小板的聚集。不適用于凝血實驗和血小板功能相關實驗的檢 測。
 
  肝素:通過與抗凝血酶Ⅲ結合,增強抗凝血酶的作用,滅活絲氨酸蛋白 酶,從而可阻止凝血酶的形成和阻止血小板聚集,阻止血液凝固。肝素鈉 1g/L 與血液 1:10
 
  優(yōu)點:抗凝能力強、不影響血細胞體積、不易溶血、能耐高溫。
 
  缺點:引起白細胞聚集。肝素抗凝血應于短時間內使用,否則放置過久血 液又可凝固。
 
  組織樣本(組織樣本一般是制成組織勻漿)
 
  處理方法:
 
  1)取適量組織塊,于預冷 PBS(0.02mol/L, pH 7.0-7.2)中清洗去除血液, 稱重后備用(組織塊較大需先剪碎后再勻漿);
 
  2)可同時選用多種勻漿方法達到較好的破碎效果:首先將組織塊移入玻璃 勻漿器,加入 5-10ml 預冷 PBS(組織與 PBS 的質量體積比建議為 1:5,即 1g 樣 本加入 5ml PBS)進行充分研磨(有條件實驗室可選用機器勻漿),該過程需在冰 上進行;得到的勻漿液可再利用超聲破碎或反復凍融進一步處理(超聲破碎過 程中注意冰浴降溫;反復凍融法可重復 2 次)。
 
  3)將制備好的勻漿液于 5000×g 離心 5 分鐘,留取上清即可檢測。
 
  4)如果樣本需要長期保存,請?zhí)砑拥鞍酌敢种苿?。根?jù)實驗需要,組織勻 漿樣本可先定量總蛋白,以便于統(tǒng)計分析數(shù)據(jù)。某些組織樣本如肝臟,腎臟,腦 組織會有假陽性反應。
 
  細胞樣本
 
  根據(jù)目的物所在部位,可選擇細胞裂解液或細胞培養(yǎng)上清作為樣本。需要注意的是:
 
  因該類樣本干擾因素較多,所以可能存在檢測不出的情況。
 
  如果目的物是分泌型,主要在胞外,即可選擇細胞培養(yǎng)上清作為樣本;
 
  如果目的物主要存在于胞內,則建議選擇細胞裂解液作為樣本類型。
 
  處理方法:
 
  細胞培養(yǎng)上清:處理方法相對簡單,取細胞培養(yǎng)上清,1000×g 離心 20 分 鐘,取上清即可檢測。
 
  細胞裂解液:
 
  1)貼壁細胞需要先用胰酶消化,離心收集細胞(懸浮細胞可直接離心收 集)
 
  2)將收集到的細胞用冷 PBS 洗 3 次
 
  3)物理方法裂解細胞(可先超聲破碎細胞,再反復凍融):
 
  i 超聲破碎:取適量 PBS 重懸細胞,用一定功率的超聲波處理細胞 懸液,使細胞急劇震蕩破裂;
 
  ii 反復凍融:將待破碎的細胞在-20 度以下冰凍,室溫融解,反復 3 次,使細胞溶脹破碎;
 
  4)將標本于 2-8 度 1500×g 離心 10 分鐘,收集上清備用。
 
  一般情況下,物理方法如反復凍融,勻漿等方法會比化學方法好,因為化 學方法會引入酸或堿,可能會對 elisa 實驗產生影響。我們也做了相關實驗來評 測化學提取液和洗滌劑對 ELISA 檢測的影響,如 RIPA、TritonX-100、NP-40 和 SDS、脫氧膽酸鈉、β巰基乙醇、DTT。
 
  痰液
 
  1)選擇痰液中較為粘稠部分稱重,加兩倍于痰量的 0.1% DTT(二硫蘇糖醇), DTT 的主要作用是溶解粘液,用吸管反復吹打,漩渦器振蕩 15s,37 度恒溫水浴振蕩 5 分鐘;
 
  2)加入兩倍于痰量的 PBS 緩沖液繼續(xù)振蕩 15-20 分鐘,150 目的金屬絲網(wǎng)過濾,1500 rpm 離心 10 分鐘吸取上清液檢測。
 
  糞便
 
  盡量采集干的糞便,糞便過稀會較難處理且降低檢測的準確性。采集的重量應大于50mg,將糞便用PBS洗3次(最終糞便質量:PBS 體積=1:9),用超聲粉碎(或搗碎)后于5000×g離心10分鐘,取上清檢測。
 
  唾液
 
  將樣品收集于離心管后在-70 度冰凍 1 小時。在冰上融化樣品后,2000×g 離 心 10 分鐘,取上清檢測。
 
  皮膚組織
 
  用勻漿機加冰的 PBS 研磨 20-50 mg 的皮膚組織使其充分溶解,離心 20 分 鐘,10000 g/分鐘,取上清檢測。
 
  牛乳
 
  于4度,12000g/分鐘離心30分鐘,去除上層脂肪,以及下層沉淀,取中間層樣本用于檢測。
 
  腦脊液、肺泡灌洗液
 
  樣本收集后于1000×g 離心20分鐘,離心后收集上清,并將標本保存于-20度,且應避免反復凍融。
 
  處理樣本的過程就是收集目標蛋白的過程,由于蛋白容易變性,降解,故 該過程應盡量溫和。樣本處理之后的儲存也非常重要,尤其注意不要反復凍融, 樣本處理之后可分裝密封保存,4 度保存應小于1周,-20 度不應超過1個月,-80 度不應超過2個月。
 
  在標本使用前應緩慢均衡至室溫,不應加熱使之融解。樣本的處理是實驗成功的第一步,以上就是關于Elisa特殊樣本處。
 
聯(lián)系人:王經(jīng)理
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